Нажмите Enter для поиска, Esc для отмены

АНАЛІЗ КОЛЕКЦІЙНИХ ЗРАЗКІВ CANNABIS SATIVA L. ЗА ВМІСТОМ КАНАБІНОЇДНИХ СПОЛУК І ХЕМОТИПОМ

Мова статті

Українська, Русский, English

Дата друку

20.12.19

Дата розміщення онлайн

11.04.2020

Установа

Інститут луб’яних культур НААН Інститут рослинництва ім. В. Я. Юр’єва НААН

Список літератури

  1. Handbook of Cannabis and related pathologies: biology, pharmacology, diagnosis, and treatment. / Ed.: V. R. Preedy. London: Academic Press, 2017. 1170 p. DOI: 10.1016/C2013‑0-18721-1
  2. Mahlberg P. G., Kim E. S. Accumulation of cannabinoids in glandular trichomes of Cannabis (Cannabaceae). Journal of Industrial Hemp. 2004. Vol. 9. Is. 1. Р. 15–36. DOI: 10.1300/J237v09n01_04
  3. Happyana N., Agnolet S., Muntendam R., Van Dam A., Schneider B., Kayser O. Analysis of cannabinoids in laser-microdissected trichomes of medicinal Cannabis sativa using LCMS and cryogenic NMR. Phytochemistry. 2013. Vol. 87. P. 51–59. DOI: 10.1016/j.phytochem.2012.11.001
  4. Fellermeier M., Zenk M. H. Prenylation of olivetolate by a hemp transferase yields cannabigerolic acid, the precursor of tetrahydrocannabinol. FEBS Letters. 1998. Vol. 427. Is. 2. P. 283–285. DOI: 10.1016/S0014-5793(98)00450-5
  5. Sirikantaramas S., Morimoto S., Shoyama Y., Ishikawa Y., Wada Y., Shoyama Y. The gene controlling marijuana psychoactivity: molecular cloning and heterologous expression of Δ1-tetrahydrocannabinolic acid synthase from Cannabis sativa L. J. Biol. Chem. 2004. Vol. 279. Is. 38. P. 39767–39774. DOI: 10.1074/jbc.M403693200
  6. Sirikantaramas S., Taura F., Tanaka Y., Ishikawa Y., Morimoto S., Shoyama Y. Tetrahydrocannabinolic acid synthase, the enzyme controlling marijuana psychoactivity, is secreted into the storage cavity of the glandular trichomes. Plant Cell Physiol. 2005. Vol. 46. Is. 9. P. 1578–1582. DOI: 10.1093/pcp/pci166
  7. Taura F., Sirikantaramas S., Shoyama Y., Yoshikai K., Shoyama Y., Morimoto S. Cannabidiolic-acid synthase, the chemotype-determining enzyme in the fiber-type Cannabis sativa. FEBS Letters. 2007. Vol. 581. Is. 16. P. 2929–2934. DOI: 10.1016/j.febslet.2007.05.043
  8. Morimoto S., Komatsu K., Taura F., Shoyama Y. Purification and characterization of cannabichromenic acid synthase from Cannabis sativa. Phytochemistry. 1998. Vol. 49. Is. 6. P. 1525–1529. DOI: 10.1016/S0031-9422(98)00278-7
  9. de Meijer E. P., Bagatta M., Carboni A., Crucitti P., Moliterni V. M., Ranalli P., Mandolino G. The inheritance of chemical phenotype in Cannabis sativa L. Genetics. 2003. Vol. 163. Is. 1. P. 335–346.
  10. Weiblen G. D., Wenger J. P., Craft K. J., ElSohly M. A., Mehmedic Z., Treiber E. L., Marks M. D. Gene duplication and divergence affecting drug content in Cannabis sativa. New Phytol. 2015. Vol. 208. Is. 4. P. 1241–1250. DOI: 10.1111/nph.13562
  11. Sarsenbaev K. N., Kozhamzharova L. S., Yessimsiitova Z., Seitbayev K. Z. H. Polymorphism of DNA and accumulation of cannabinoids by the cultivated and wild hemp in Chu Valley. World Appl. Sci. J. 2013. Vol. 26. Is. 6. P. 744–749. DOI: 10.5829/idosi.wasj.2013.26.06.13381
  12. Aizpurua-Olaizola O., Soydaner U., Öztürk E., Schibano D., Simsir Y., Navarro P., Etxebarria N., Usobiaga A. Evolution of the cannabinoid and terpene content during the growth of Cannabis sativa plants from different chemotypes. J. Nat. Prod. 2016. Vol. 79. Is. 2. P. 324−331. DOI: 10.1021/acs.jnatprod.5b00949
  13. Namdar D., Mazuz M., Ion A., Koltai H. Variation in the compositions of cannabinoid and terpenoids in Cannabis sativa derived from inflorescence position along the stem and extraction methods. Ind. Crops Prod. 2018. Vol. 113. P. 376–382. DOI: 10.1016/j.indcrop.2018.01.060
  14. Pacifico D., Miselli F., Carboni A., Moschella A., Mandolino G. Time course of cannabinoid accumulation and chemotype development during the growth of Cannabis sativa L. Euphytica. 2007. Vol. 160. Is. 2. P. 231–240. DOI: 10.1007/s10681-007-9543-y
  15. Pacifico D., Miselli F., Micheler M., Carboni A., Ranalli P., Mandolino G. Genetics and marker-assisted selection of the chemotype in Cannabis sativa L. Mol. Breeding. 2006. Vol. 17, Iss. 3. P. 257–268. DOI: 10.1007/s11032-005-5681-x
  16. Welling M. T., Liu L., Shapter T., Raymond C. A., King G. J. Characterisation of cannabinoid composition in a diverse Cannabis sativa L. germplasm collection. Euphytica. 2016. Vol. 208. Is. 3. P. 463–475. DOI: 10.1007/s10681-015-1585-y
  17. Mishchenko S., Mokher J., Laiko I., Burbulis N., Kyrychenko H., Dudukova S. Phenological growth stages of hemp (Cannabis sativa L.): codification and description according to the BBCH scale. Žemės ūkio mokslai. 2017. Vol. 24. Is. 2. P. 31–36. DOI: 10.6001/zemesukiomokslai.v24i2.3496
  18. Small E., Beckstead H. D. Common cannabinoid phenotypes in 350 stocks of Cannabis. Lloydia. 1973. Vol. 6. Iss. 2. P. 144–165.
  19. Fournier G., Richez-Dumanois C., Duvezin J., Mathieu J.-P., Paris M. Identification of a new chemotype in Cannabis sativa: cannabigerol-dominant plants, biogenetic and agronomic prospects. Planta Medica. 1987. Vol. 53. Is. 3. P. 277–280. DOI: 10.1055/s-2006-962705
  20. Mandolino G., Carboni A. Potential of marker-assisted selection in hemp genetic improvement. Euphytica. 2004. Vol. 140. Is. 1. P. 107–120. DOI: 10.1007/s10681‑004‑4759‑6
  21. Міщенко С. В. Кореляційні зв’язки між основними канабіноїдними сполуками рослин сучасних безнаркотичних сортів конопель. Вісник Полтавської державної аграрної академії. 2012. № 2. С. 65–69. DOI: 10.31210/visnyk2012.02.14
  22. Mandolino G., Bagatta M., Carboni A., Ranalli P., de Meijer E. Qualitative and quantitative aspects of the inheritance of chemical phenotype in Cannabis. Journal of Industrial Hemp. 2003. Vol. 8. Is. 2. P. 51–72. DOI: 10.1300/J237v08n02_04

Розділ

Джерела та донори

Анотація

Досліджено 55 колекційних зразків конопель посівних (Cannabis sativa L.) різного генетичного і еколого-географічного походження, які характеризувались мінливістю ознак ідентифікованих канабіноїдних сполук. Вміст канабідіолу (КБД) знаходився в межах від 0,0052 до 1,7251, тетрагідроканабінолу (ТГК) — від 0,0000 (повної відсутності) до 0,0775 (що не перевищує дозволеної законодавством норми) і канабігеролу (КБГ) — від 0,0000 (повної відсутності) до 0,8892 %. За ознакою високого вмісту КБД виділено 21 зразок (38 %), повної відсутності ТГК — дев’ять зразків (16,4 %) і високого вмісту КБГ – 3 зразки (або 5,4 % від загальної кількості). Їх рекомендовано використовувати у практичній селекції, зокрема для створення сортів медичного напряму з підвищеним вмістом КБД і/або КБГ при відсутності ТГК. Проаналізовані зразки віднесено до 3-х хемотипів конопель – ІІІ (36 зразків, або 65,5 %), IV (1 зразок, або 1,8 %) і V (18 зразків, або 32,7 % від загальної кількості). Установлено сильні кореляційні зв’язки між вмістом КБД і ТГК та майже відсутність взаємозв’язку КБГ з іншими канабіноїдними сполуками.

Ключові слова

коноплі, генетичні ресурси, канабідіол, тетрагідроканабінол, канабігерол, хемотип